Abstracte achtergrond
honing is besproken als een therapeutische optie in wondgenezing sinds oude tijd. Het zou ook een alternatief voor de gebruikelijke antimicrobiële bij parodontitis behandeling. De in-vitro studie was erop gericht om de antimicrobiële werkzaamheid te bepalen tegen Porphyromonas gingivalis
als een belangrijke paropathogeen.
Methods
Een Manuka en één binnenlandse imker honing zijn geselecteerd voor de studie. Als een screening, werden MIC's van de honing tegen 20 P. gingivalis
stammen bepaald. Inhoud van methylglyoxal en waterstofperoxide als potentiële antimicrobiële verbindingen werden bepaald. Deze componenten (tot 100 mg /l), propolis (tot 200 mg /l) en twee honing (tot 10% w /v) tegen vier P. gingivalis
stammen werden getest in planktonische groei en in een single-species biofilm.
Resultaten
2% van Manuka honing remde de groei van 50% van het plankton P. gingivalis
, de respectieve MIC
50 van de Duitse imker honing was 5% . Manukahoning bevatte 1,87 mg /kg waterstofperoxide en binnenlandse honing 3,74 mg /kg. De hoeveelheid methylglyoxal bleek 2 mg /kg in de binnenlandse honing en 982 mg /kg in de Manukahoning zijn. MIC voor waterstofperoxide was 10 mg /l - 100 mg /l, voor methylglyoxal 5-20 mg /l, en propolis 20 mg /l - 200 mg /l. 10% van beide typen honing remde de vorming van P. gingivalis
biofilms en verminderde het aantal levensvatbare bacteriën in 42 uur oude biofilms. Noch een totale preventie van biofilmvorming of een volledige uitroeiing van een 42 uur oude biofilm door elk van de geteste verbindingen en de honing gevonden.
Conclusies
Honey werkt antibacterieel tegen P. gingivalis
. De waargenomen uitgesproken effecten van Manuka honing tegen planktonische bacteriën, maar niet binnen de biofilm kan worden toegeschreven aan methylglyoxal als de karakteristieke antimicrobiële component.
Sleutelwoorden
Honey Porphyromonas gingivalis
biofilm Methylglyoxal Minimale remmende concentratie Electronic aanvullend materiaal
online versie van dit artikel (doi:. 10 1186 /1472-6831-14-24) bevat aanvullend materiaal, dat beschikbaar is voor geautoriseerde gebruikers is achtergrond
Parodontitis is een chronische ontsteking die ontstaat als reactie op. de aanwezigheid van subgingivale bacteriën. Een beperkt aantal bacteriesoorten zijn geassocieerd met periodontitis en sterk bewijs is verzameld om te betrekken Porphyromonas gingivalis
, een anaërobe Gram-negatieve bacterie in de pathogenese [1-3]. Bovendien P. gingivalis
werd verondersteld dat een hoeksteen ziekteverwekker bij de ontwikkeling van parodontitis [4] zijn, wordt virulentie meest geassocieerd met zijn hoge proteolytische activiteit [5].
Op basis van de impact van pathogenen, de anti-infectieve regime is een belangrijke component in een behandeling van parodontitis. Het voorkomen herkolonisatie bacteriën, chloorhexidine digluconaat (CHX) is een veel gebruikt middel bij parodontitis behandeling [6, 7]. Antibiotica worden aanbevolen voor ernstige gevallen [8, 9]. Ontwikkeling van resistentie tegen antibiotica en bijwerkingen van de geneesmiddelen impliceren zoeken naar alternatieven. Onder andere zou plantaardige therapie met inbegrip van de combinatie met antibiotica of het gebruik van honing een optie [10, 11] zijn.
Honing is een oude wond behandeling en werd opnieuw geïntroduceerd in de moderne medische behandeling vanwege zijn antimicrobiële en wondhelingbevorderende werkzaamheid [12]. Waterstofperoxide bleek een antibacteriële bestanddeel van honing [13] zijn. Voor een paar jaar bijzonder belang is gericht op de Manuka honing die is afgeleid van de Manuka boom (Manuka
) groeit in Nieuw-Zeeland. In de Manukahoning heeft hoge niet- peroxide activiteit methylglyoxal werd geïdentificeerd als de dominante antibacteriële bestanddeel [14]. Honing is bewezen effectief bij de behandeling van recidiverende herpes simplex laesies te zijn [15], brandwonden [16], postoperatieve wondinfecties [17]. Het bleek aantallen mutans streptococcen in speeksel xerostomic patiënten [18] te verminderen. Bij patiënten met gingivitis en plaque, de Manukahoning kon bloeden en de hoeveelheid plaque [19] te verminderen.
Ander belangrijk bijenproduct met een antimicrobiële activiteit propolis, een harsachtige stof die bijen gebruiken voor het afdichten van de kammen [ ,,,0],20]. Als toevoeging aan tandpasta [21] of irrigatie [22], propolis kan parodontale gezondheid.
Onze studie was gericht op het effect van twee soorten honing en hun meest bekende antimicrobiële verbindingen waterstofperoxide en methylglyoxal bepalen, alsmede vanaf propolis op P. gingivalis
stammen in plankton groei en in een single-species biofilm.
Methods
Porphyromonas gingivalis
stammen
Twintig P. gingivalis
stammen uit de stam collectie van het Laboratorium voor Microbiologie Oral (Universiteit van Bern, Department of Parodontologie) werden opgenomen in de screening experimenten bepalen van minimale remmende concentratie (MIC) waarden van de honing. Stammen opgenomen waren twee laboratoriumstammen (ATCC 33.277, W83) en 18 opgespaarde als isolaten van parodontitis monsters (BGH40-2, D2-4-3, D5-2-2, J358-1, J361-1, J362-1, J374 -1, J378-1, J424-1, J426-1, J430-1, J435-1, J439-1, M5-1-2, mergel, PL55, PL110, PL126). In de follow-up experimenten het type stam ATCC 33.277 en drie andere stammen (M5-1-2, mergel, J361-1) werden gebruikt. De selectie was gebaseerd op de verschillende kolonie morfologie. M5-1-2 stam vormen gladde kolonies, Marl erg ruw enen en J361 kolonies vergelijkbaar met die gevormd door het type stam. De identiteit werd bevestigd met 16S rDNA sequentieanalyse.
Al stammen werden bevroren voorafgaand aan de experimenten gehouden. Zij werden overgebracht en gekweekt anaeroob (10% H 2, 5% CO 2, 85% N 2) op Schaedler agarplaten (Oxoid, Basingstoke, GB) met 8% schapenbloed 24 uur vóór het starten van de experimenten bij 37 ° C.
Honeys, hun potentieel antimicrobiële verbindingen en propolis
een lokale (Duits) veelbloemige bloesems honing van een imker en een Nieuw-Zeelandse Manuka honing (Manuka Health Nieuw Zeeland Ltd, te Awamutu, Nieuw Zeeland) werden geselecteerd voor experimenten. Tests van het kweken van de twee meiden in anaerobe omstandigheden leverde geen microbiële groei niet te tonen; dus geen gammastraling toegepast. Alle media in de experimenten met honing bevatte 0,1% (v /v) Tween 20 om de oplosbaarheid van honing verhogen. Ondernemingen De inhoud van waterstofperoxide werd gemeten met behulp van kaliumpermanganaat [23] en die van methylglyoxal werd bepaald door reverse- fase hoge prestatie vloeistofchromatografie (RP-HPLC) volgens Mavric et al. [14]. Methylglyoxal en waterstofperoxide (beide Sigma-Aldrich, Steinheim, Duitsland) beschikbaar waren 40% en 30% oplossing in water. Propolis werd verkregen als een 20% ethanolische dilutie lokale imker. Dus, in alle experimenten testen propolis, de desbetreffende hoeveelheid ethanol werd toegevoegd.
Bepaling van minimale remmende concentraties Ondernemingen De gevoeligheden werden bepaald door de micro-bouillon verdunningstechniek als een standaardtechniek microbiologie [24]. 17 delen (170 pl elk) van Wilkins-Chalgren bouillon (Oxoid) werden gemengd met 1 deel van bacteriële suspensie (10 pl) en 2 delen van de honing verdund in 0,9% natriumchloride (20 pi elk). De uiteindelijke concentraties varieerden tussen 1 en 10% (w /v) honing. Ook de MIC van methylglyoxal en waterstofperoxide bepaald. De concentraties te testen waren tussen 0,1 en 100 mg /l. Propolis werd getest in het bereik van 20 - 20.000 mg /l. 0,9% natriumchlorideoplossing diende als groeicontrole. Na een incubatietijd van 42 uur werden de MIC visueel bepaald. De resultaten werden bevestigd door subcultuur van elk 10 pl bouillon op Schaedler agarplaten. De MIC werd gedefinieerd als de laagste concentratie onderdrukken zichtbare groei.
Single-species biofilms Ondernemingen De bacteriestammen werden voorgekweekt in Schaedler bouillon (Oxoid) toegevoegd door 8% gelyseerde schapen bloed 's nachts. Effecten op de vorming van een biofilm assay te bepalen, werden objectglaasjes in putjes van platen met 24 putjes gebracht en zijn bedekt met kunstmatige speeksel (250 pl elk) gedurende 1 uur bij 37 ° C om een vlies te creëren. 1 l van het speeksel (ISO 10993) bevatte 0,7 g natriumchloride, 0,26 g dinatriumfosfaat, 0,33 g kaliumthiocyanaat, 1,2 g kaliumdiwaterstoffosfaat 1,5 g natriumwaterstofcarbonaat en 1,2 g kaliumchloride; Deze oplossing werd aangevuld met 4 g varkens mucine type II en 50 g albumine. Na verwijdering van de kunstmatige speeksel, werd 1,8 ml bacteriesuspensie overgedragen aan de putjes, gevolgd door 200 pl van honing in verschillende verdunningen. De eindconcentraties van honing in het mengsel was 1 en 10% (w /v). De negatieve controle was 0,9% natriumchlorideoplossing. Na 6 uur en 24 uur incubatie in een anaërobe atmosfeer op 37 ° C, de schijfjes werden verwijderd, kort ondergedompeld in 0,9% natriumchlorideoplossing met niet hechtende bacteriën te verwijderen en vervolgens in andere buisjes die 0,9% natriumchlorideoplossing. De buizen zijn blootgesteld aan ultrasone trillingen van 160 W (Sonorex Super RK102H, Bandelin, Berlijn, Duitsland) gedurende 1 min. Na een volgende vortex gedurende 1 minuut, het aantal levensvatbare P. gingivalis
werden bepaald als kolonievormende eenheden (CFU) na plateren van 100 gl van de suspensie op Schaedler agarplaten en verzorging.
Verder zijn de effecten van de honing op een 42 uur oude biofilm werden getest. In deze experimenten werden de bacteriële suspensies in de putjes geplaatst na het maken van de kunstmatige vlies. Tweeënveertig uur na het begin incubatie werden de supernatanten zorgvuldig verwijderd en vervangen door kweekbouillon en honing oplossingen. De uiteindelijke concentraties die in deze experimenten waren ook 1% en 10% (w /v) honing. Na een additionele incubatietijd van 6 uur en 24 uur werden de aantallen van levende bacteriën bepaald zoals hierboven beschreven.
In vervolg experimenten, waterstofperoxide en methylglyoxal werden getest in plaats van honing. De eindconcentraties waren 5, 20 en 100 mg /l waterstofperoxide en methylglyoxal respectievelijk. Propolis werd getest in de eindconcentraties van 20 mg /l en 200 mg /l.
Alle experimenten werden in drie onafhankelijke herhalingen minimaal. De statistische analyse werd door t-toets voor onafhankelijke steekproeven met SPSS Statistics v.17.0 (IBM, Chicago, IL). Testmonsters werden elk vergeleken met controles. Het niveau van significantie werd ingesteld op p & lt; 0.05.
Resultaten
Inhoud van potentieel antimicrobiële verbindingen Ondernemingen De Manuka honing bevatte 1,87 mg /kg waterstofperoxide en de binnenlandse honing 3,74 mg /kg. De hoeveelheid methylglyoxal bleek 2 mg /kg in de binnenlandse honing en 982 mg /kg in de Manukahoning zijn.
Minimale remmende concentraties
In de screeningstesten inclusief 20 P. gingivalis stammen
, de minimale remmende concentratie tegen 50% van de opgenomen stammen (MIC 50) was 5% voor de lokale binnenlandse imker honing en 2% voor de Manuka honing. Binnenlandse honing geen gelijke tred met drie stammen niet remmen tot 10% van de honing, terwijl de groei van enige stam die werd onderdrukt met 10% (w /v) Manukahoning.
Voortdurende experimenten vier stammen werden opgenomen . De groei van P. gingivalis stammen
werd geremd door 10 mg /l methylglyoxal met uitzondering van de referentiestam (ATCC 33.277) waarbij de MIC was 100 mg /l van de verbinding. Het bereik van de MIC van waterstofperoxide is tussen 5 en 20 mg /l. Propolis was groeiremmende in het bereik van 20 mg /l (M5-1-2 stam) tot 200 mg /l (mergel stam) (Tabel 1) .table 1 Minimale remmende concentraties (MIC) honing, hun potentieel antimicrobiële componenten en propolis tegen vier Porphyromonas gingivalis stammen
Porphyromonas gingivalis
stam
MIC honing (% w /v)
MIC van de componenten (mg /l)
MIC van propolis (mg /l)
Manuka
Lokale
Waterstofperoxide methylglyoxal
ATCC 33277
2
5
10
100
40
M5-1-2
2
5
5
10
20
MaRL
2
10
20
10
200
J361-1
2
5
5
10
40
Effecten van honing op biofilms
Honey remde de vorming van P. gingivalis
single-species biofilm. Zes uur na het begin experimenten geen verschil zichtbaar waren. Bij de 24 uur tijd, beide soorten honing verminderde concentratie-afhankelijk van het aantal levende bacteriën. Wanneer de hogere concentratie van 10% gebruikt, het aantal bacteriën in biofilm (gemiddelde van alle stammen) waren significant lager (p elk & lt; 0,05) dan bij de controles zonder toevoeging van honing (figuur 1). Figuur 1 Effect van honing op de vorming, alsmede op een 42 uur-jarige alleenstaande biofilms van vier Porphyromonas gingivalis stammen. Manukahoning en Duitse lokale honing toegevoegd in twee concentraties begin formatie of op een reeds 42-uur oude biofilm. Kolonievormende eenheden werden bepaald elke 6 uur en 24 uur na toevoeging van de honing (CFU telt binnen biofilm; * p & lt; 0,05; ** p & lt; 0,01 in vergelijking met controles op deze respectievelijke)
Toevoeging van de honing. een 42 uur oude biofilm resulteerde ook in een vermindering van de gemiddelde tellingen van P. gingivalis
stammen binnen de biofilm 6 uur en 24 uur na blootstelling (6 h 1% lokaal geproduceerde honing p & lt; 0,05, alle andere p & lt; 0,01). De verschillen tussen de twee typen honing waren niet significant in dezelfde concentratie noch in de experimenten testen van het effect op biofilmvorming of als een 42-uur oude biofilm werd bestudeerd (Figuur 1).
Bij het analyseren van de spanning afhankelijke effecten, de klinische isolaten waren gevoeliger in vergelijking met type stam (controle). De verschillen waren significant (p & lt; 0,05) 1% (w /v) van Manukahoning 6 uur na aanvang van biofilmvorming. In de experimenten waar de uitwerking honing op 42 uur oude biofilms, 10% van de Manukahoning (p & lt; 0,05) en 1% en 10% van de lokaal geproduceerde honing (elk p & lt; 0,01) vertoonde een sterkere antibacteriële invloed op klinische isolaten dan de referentiestam 6 uur na toevoeging aan de bestaande biofilms. 24 uur na toevoeging van de honing beide soorten experimenten, stam afhankelijke verschillen waren niet langer zichtbaar (figuur 2). Figuur 2 Betrekkingen van enkele Porphyromonas gingivalis biofilms na toevoeging van honing met onbehandelde patiënten per stuk (kolonievormende eenheden).
Effecten van methylglyoxal en waterstofperoxide op biofilms Ondernemingen De toevoeging van antibacteriële verbindingen methylglyoxal en waterstofperoxide veranderde niet de CFU tellingen van P. gingivalis
binnen biofilm op elk tijdstip, noch in de biofilm-vormende assays noch in de experimenten met 42 uur oude biofilms (figuur 3). Verder werden stam afhankelijke verschillen niet gedetecteerd (gegevens niet getoond). Figuur 3 Effect van potentiële antimicrobiële verbindingen van de honing op de vorming, alsmede op een 42 uur-oude bestaande single-species biofilms van vier Porphyromonas gingivalis stammen. Methylglyoxal waarbij de potentiële antimicrobiële verbinding Manuka honing en waterstofperoxide als potentiële antimicrobiële verbinding lokale Duitse honing werden in drie concentraties begin formatie of op een reeds 42-uur oude biofilm. Kolonievormende eenheden werden bepaald elke 6 uur en 24 uur na toevoeging van de verbindingen (CFU telt binnen biofilm; * p & lt; 0,05; ** p & lt; 0,01 elke vergelijking met controles op deze respectievelijke)
Effect van propolis. op biofilms
Een propolis concentratie van 20 mg /l verminderde de CFU tellingen in de vormende biofilm na 24 h (p & lt; 0,05). Geen effecten gevonden door het testen van de hogere concentratie van 200 mg /l. Toevoeging van propolis een 42 uur oude biofilm niet de aantallen bacteriën veranderen na 6 uur. Na 24 uur wordt de lagere concentratie van 20 mg /l propolis was effectief in het verminderen van de CFU counts; weer leverde 200 mg /l geen effect (Figuur 4) laten zien. De meest resistente stam was de mergel stam; bij de vorming biofilm ook in de 42 uur oude biofilm, werden hogere aantallen CFU in vergelijking met de andere stammen na 24 uur toevoegen van 200 mg /l propolis (gegevens niet getoond). Figuur 4 Effect van propolis op de vorming, alsmede op een 42 uur oude single-species biofilms van vier Porphyromonas gingivalis stammen. Propolis is in twee concentraties aan het begin van de formatie of op een reeds 42-uur oude biofilm. Kolonievormende eenheden werden bepaald elke 6 uur en 24 uur na toevoeging van propolis (CFU telt binnen biofilm; * p & lt; 0,05; ** p & lt; 0,01 elk in vergelijking met controles op de respectievelijke tijd). Discussie
honing werkt antibacterieel tegen P. gingivalis
stammen, wordt het effect is meer uitgesproken voor de Manukahoning vergeleken met een lokaal geproduceerde imker honing. De verkregen MIC waarden te veranderen of onder die gerapporteerd voor andere soorten. . Bijv
, 10 - 50% honing waren groeiremmende tegen verschillende enterobacterie en stafylokokken, verschillende soorten honing toonde slechts geringe verschillen in antimicrobiële werking [25-27]. Tegenspreken de resultaten met betrekking tot orale bacteriën. In een studie MIC's van 12,5 - 25% werden bepaald tegen orale streptokokken [25], terwijl anderen vonden 0,1% groei-remmende tegen orale streptokokken en anaerobe bacteriën [28]
Honing bevat verschillende antimicrobiële verbindingen.. In deze studie werden waterstofperoxide en methylglyoxal afzonderlijk getest. Het gehalte van methylglyoxal in Manukahoning bijna 1 g /kg, iets hoger dan bepaald door andere [29, 30]. Naar aanleiding van de MIC's van de honing en methylglyoxal, zou deze verbinding die verantwoordelijk is voor de antimicrobiële activiteit van de Manuka honing tegen de plankton P. gingivalis
stammen zijn. Het gehalte aan waterstofperoxide was hoger in de binnenlandse honing dan in de Manuka honing. Anderen vonden geen waterstofperoxide binnen Manuka honing [30]. Maar een andere studie waarbij antimicrobiële werkzaamheid was verminderd bij waterstofperoxide van Manuka honing werd verwijderd impliceert ook een inhoud van die stof in honing. Onze resultaten die een gebruikte methode kan positief worden beïnvloed door valse organische verbindingen met honing [23]. Toch is de gemeten concentraties van waterstofperoxide binnen beide soorten honing waren veel te laag voor een antimicrobiële werking tegen de P. gingivalis
stammen opgenomen in onze studie. Maar interessant, de stam met het beste bestand tegen waterstofperoxide was ook het minst gevoelig voor de lokaal geproduceerde honing. Een ander niet onderzocht potentiële antimicrobiële verbinding in de honing is de suiker, maar oefent geen of weinig antibacteriële invloed [25, 26]. Bovendien kunnen natuurlijk voorkomende antimicrobiële peptiden dragen bij tot de antimicrobiële werkzaamheid van de honing, onlangs bij defensin is ontdekt in een medische (Revamil® source) honey [30]. Verder is een effect van een afnemende pH kan niet volledig worden uitgesloten, aangezien 10% honing verminderde de pH van ongeveer pH 0,3, gemeten in bouillon. Propolis werkt antibacterieel tegen verschillende orale anaerobe bacteriën onder wie P. gingivalis
[31]; MIC van propolis tegen P. gingivalis
ATCC 33277 werden bij twee studies ligt tussen 64 en 512 mg /l (verschillende soorten propolis oorsprong uit Brazilië en Turkije getest) [32, 33]. In onze studie slechts één soort propolis afkomstig uit laagland regio in Duitsland gekenmerkt door een gematigd klimaat was inbegrepen. MIC tegen P. gingivalis
ATCC 33.277 bleek iets lager dan voorheen gemeld te zijn. MIC tegen klinische isolaten waren niet uniek; het bereik was 20-200 mg /l
Biofilms zijn bekend resistenter tegen antibiotica dan planktonische groeiende bacteriën zijn;. antibiotica zijn 100-voudig minder gevoelig tegen P. gingivalis
in biofilm [34]. Daarom honing met inbegrip van haar potentieel antimicrobiële verbindingen werden ook getest op een P. gingivalis
biofilm. Het gebruikte model was simpel met behulp van kunstmatige speeksel orale omstandigheden te simuleren. Maar het moet worden opgemerkt dat tandaanslag is een veel complexere goed georganiseerde biofilm [35, 36] bestaan tot 7000 soortsniveau phylotypa [37], waarbij de communicatie plaatsvindt binnen verschillende soorten [38]. Hier wilden we een potentieel effect op de vorming van biofilm die de in vivo situatie na mechanische verbreking van een biofilm en een 42 uur oude biofilm tonen. De werkzaamheid van honing en de verbindingen op P. gingivalis
biofilms was beperkt. Noch een volledige uitroeiing van een 42 h-oude biofilm, noch in totaal voorkomen van een vorming van biofilm werd aangetoond. Slechts 10% van beide soorten honing en 20 mg /l propolis konden de CFU tellingen biofilm binnen 24 uur na begin van biofilmvorming verminderen. Verrassend is dat de effecten van honing waren opmerkelijk op een 42 uur oude biofilm. In onze studie van de werking van in het bijzonder de Manuka honing tegen P. gingivalis
biofilms lijkt te zijn niet alleen te wijten aan een bacteriedodende effect van methylglyoxal als is was zelf niet effectief onder deze omstandigheden. Een mogelijke interactie met P. gingivalis
capsule een rol in het verstoren biofilms door de bevinding dat in tegenstelling tot de meeste klinische isolaten de meest resistente ATCC 33277 stam wordt gekenmerkt door het missen kapselvorming [39, 40] heeft spelen. Onlangs werd gerapporteerd dat ongeveer 25 - 50% honing bactericide waren tegen S. aureus
waaronder methicilline-resistente stammen en Pseudomonas aeruginosa
overnight single species biofilm, anders dan de meeste van de antibiotica die geen vertoonden effect [41]. Een andere studie vond 6-12% van Manuka honing en 12-25% van een Noorse bos honing preventief in biofilmvorming van stafylokokken en gram-negatieve aërobe [42]. Slechts één studie onderzocht het effect van methylglyoxal op biofilmvorming, 1,05 mg /ml methylglyoxal waren bactericide tegen 30 h oude S. aureus
biofilms [29]. Interessant is dat deze waarde was hoger dan die gemeten zijn respectieve honing [29] impliceert dat methylglyoxal niet de enige verbinding optredende bactericide. In deze studies de geteste concentraties van honing en methylglyoxal hoger dan in onze testen. We moesten zorgen voor geschikte groeiomstandigheden van P. gingivalis
die een voldoende hoeveelheid voedingsstoffen media vereist. Verder in mondholte, een verdunningseffect door speeksel en creviculaire stroom moet worden beschouwd. Niettemin dient latere studies ook hogere concentraties testen van methylglyoxal.
In experimenten met propolis, een remmend effect alleen in de concentratie van 20 mg /l werd gevonden, heeft de hogere geteste concentratie van propolis geen invloed op de tellingen van zijn levensvatbare bacteriën in biofilms. Waarschijnlijk de beperkte effect van propolis niet alleen door de directe antimicrobiële activiteiten. Propolis negatieve wisselwerking met S. aureus
adhesie en biofilmvorming door remming virulentiefactoren in lage concentratie [43].
Naast de antibacteriële activiteit hebben immunmodulatory effecten honing beschreven. Honing stimuleert de afgifte van ontstekingscytokinen van monocyten [44], wordt mRNA expressie van TGF-β als wondhelingbevorderende cytokine opgereguleerd [45]. Propolis heeft geen hoge cytotoxiciteit tegen parodontale ligament cellen [46]. Het onderdrukt synthese van inflammatoire cytokines, terwijl TGF-β1 wordt verhoogd [47].
In een in vitro studie werd aangetoond dat chloorhexidine fungeert meer antibacteriële dan honing [48]. De toevoeging van honing of componenten daarvan natuurlijke producten mondspoelingen, tandpasta's kunnen worden als een positieve optie preventie en behandeling van parodontitis besproken. Een subgingivale irrigatie met propolis Extraxt verbeterde de klinische parameters en verminderde de graven van P. gingivalis
[22]. In een pilot-studie met gingivitis patiënten, het gebruik van een kauwgom met Manuka honing verminderde de inflammatoire variabelen en de plaque-score in vergelijking met een kauwgom zonder honing [19].
Conclusies
Kortom, honing vooral manukahoning fungeert groeiremmende op P. gingivalis
als belangrijke paropathogeen.
Deze gevolgen voor planktonische bacteriën, maar niet binnen biofilm is gebaseerd op het ingrediënt methylglyoxal. Honing kan biofilms met P. gingivalis
vernietigen. Daarom is een toevoeging van honing of kwikverbindingen orale gezondheidszorg producten kunnen potentieel in preventie en behandeling van parodontitis hebben. Meer studies zijn nodig om met name het effect van honing en de verbindingen op orale soorten geassocieerd met parodontitis te controleren.
Verklaringen
Erkenning
Wij zijn dankbaar voor Claudia Ranke (Universitair Ziekenhuis Jena) voor een uitstekende hulp bij het uitvoeren van de in vitro assays. De auteurs willen graag Wilfried Dolz en Martin Kramesberger bedanken voor het verstrekken van ons de lokale imker honing en propolis. Juergen W. Einax '(Universiteit van Jena) nuttige adviezen voor de bepaling van waterstofperoxide inhoud binnen de honing worden zeer gewaardeerd. Wij danken Richard Miron (Universiteit van Bern) voor taal correcties en Walter Bürgin (Universiteit van Bern) voor statistische advies. Deze studie werd institutioneel gefinancierd. Geen externe financiering werd verstrekt.
Authors 'originele ingediende dossiers voor afbeeldingen
Hieronder staan de links naar de auteurs oorspronkelijke ingediende dossiers voor afbeeldingen. 'Originele bestand voor figuur 1 12903_2013_363_MOESM2_ESM.tif Authors' 12903_2013_363_MOESM1_ESM.tif Auteurs originele bestand voor 'originele bestand voor figuur 3 12903_2013_363_MOESM4_ESM.tif Authors' figuur 2 12903_2013_363_MOESM3_ESM.tif Auteurs originele bestand voor figuur 4 Concurrerende belangen Ondernemingen De auteurs verklaren dat zij hebben geen concurrerende belangen. bijdragen
Authors '
SE deelgenomen aan de planning en het ontwerp van het onderzoek als in de data-analyse. GS deed het microbiologisch laboratorium werk. JK deelgenomen aan studie design en data-analyse. JA en TH uitgevoerde analyse van de honing. WP deelgenomen aan de planning en het ontwerp van de studie. Alle auteurs hebben deelgenomen aan het opstellen van het manuscript; ze hebben gelezen en goedgekeurd het definitieve manuscript.
