Tandheelkundige gezondheid > Oral Problemen > Dental Health > Gebruik van alcohol azijn in de remming van Candida spp. en het effect daarvan op de fysische eigenschappen van acryl resins

Gebruik van alcohol azijn in de remming van Candida spp. en het effect daarvan op de fysische eigenschappen van acryl resins

 

Abstracte achtergrond
Gezien de hoge prevalentie van orale candidiasis en het beperkte aantal antifungale middelen beschikbaar zijn voor besmetting te bestrijden, deze studie onderzocht de in vitro
antifungale activiteit van alcohol azijn op Candida
spp. en het effect daarvan op de fysische eigenschappen van acrylharsen.
Methoden
Tests aan de minimale remmende concentratie (MIC) en Minimum Fungicide Concentratie (MFC) azijn alcohol te bepalen (0,04 g /ml azijnzuur) en nystatine ( controle) uitgevoerd. De antischimmelactiviteit van alcohol azijn werd beoordeeld door middel van microbiële groei kinetische assays en remming van Candida albicans
hechting aan acrylhars op verschillende tijdstippen van de tijd. Oppervlakteruwheid en de kleur van de acrylhars werden geanalyseerd met een ruwheid meter en kleuranalysator apparaat.
Resultaten
alcoholazijn toonde MIC 75% en MFC 62,5% van 2,5 mg /ml, fungicide vanaf 120 min, verschillend van nystatine (p & lt; 0,0001), die schimmelvorming belemmerend effect sorteerden. Alcoholazijn veroorzaakt grotere remming van C. albicans
hechting aan de acrylhars (p ≤ 0.001) in vergelijking met nystatine en niet de ruwheid en kleurparameters van het materiaal niet veranderen.
Conclusie
alcoholazijn toonde schimmelwerende eigenschappen tegen Candida
spanningen en veroorzaakte geen fysieke veranderingen aan de kunsthars.
Sleutelwoorden
Candidiasis Orale Candida albicans
azijnzuur Dental prothese Achtergrond
Gezien de toegenomen levensverwachting en een grotere toegang van de bevolking tot tandverzorging, er een hogere prevalentie van Dragers kunstgebit door significant verlies van tanden bij ouderen, zowel in ontwikkelde of ontwikkelingslanden [1,2].
bij gebruik van tandprothesen, het voorkomen van infecties veroorzaakt door schimmelsoorten, met name Candida
, is gebruikelijk en meestal gerapporteerd bij personen met een slechte algemene gezondheid en immuunsuppressie [3]. Deze infecties worden prothese stomatitis genoemd en kan klinisch worden geïdentificeerd op basis van de verschillende graden van erytheem aanwezig op het slijmvlies onderliggende basis van gedeeltelijke of volledige prothesen. Onder de meest voorkomende etiologische factoren zijn: slechte mondhygiëne; slecht uitgerust kunstgebit; verzwakt immuunsysteem; willekeurige gebruik van antibiotica; en proliferatie van Candida spp
. [4].
Een van de belangrijkste factoren voor de kolonisatie van Candida spp
. ligt in hun aanpasbaarheid aan verschillende groei "habitat" door de vorming van microbiële gemeenschappen verbonden aan een extracellulaire matrix polysacchariden, waaronder speekseleiwitten. Candida
snel koloniseren basis van acrylhars, waardoor een grotere stabiliteit van de schimmelinfectie in de gastheer [5].
Als schimmelinfecties van de mondholte veroorzaakt door Candida spp
. zijn oppervlakkig, heeft uitwendig gebruik van nystatine en miconazol aanbevolen. Bij een no positieve reactie op deze therapeutische middelen, kunnen andere stoffen zoals fluconazol en ketoconazol worden voorgeschreven voor systemisch gebruik [6,7]. De willekeurige gebruik van gebruikelijke antischimmelmiddelen resulteert in de selectie van resistente stammen, vooral bij patiënten met immunosuppressie en bij patiënten met ernstige systemische ziekten [8]. Dit feit rechtvaardigt de ontwikkeling van nieuwe therapieën voor gebruik in de dagelijkse klinische praktijk [9]. Ook moet worden vermeld dat vele
Candida spp. kunnen de acrylhars gebruikt bij de vervaardiging van prothesen op een diepte van 1 tot 2 pm [10] penetreren, waardoor de nadruk op de noodzaak van een product waarmee het verwijderen van de biofilm zonder nadelige gevolgen voor de mechanische eigenschappen van het hars. Vermeldenswaard is dat onder de vereiste eigenschappen van materialen die bij de vervaardiging van prothesen, die in verband met ruwheid, oppervlaktespanning, elektrostatische interacties en hardheid zijn klinisch relevant omdat zij biofilm accumulatie en kleurverandering kan beïnvloeden. Oppervlakteruwheid veroorzaakt hechting en behoud van C. albicans
, hetgeen van bijzonder belang is voor het ontstaan ​​van stomatitis [11].
In dit verband wordt de hypothese dat alcohol azijn en ter voorkoming prothese stomatitis vanwege de desinfecterende werking van de acrylhars voor de vervaardiging van prothesen. Een lage potentie waterstof leiden tot verspreiding van azijnzuur en de mogelijke interactie met enzymen betrokken bij de vorming van ergosterol, een belangrijke component van fungale plasmamembranen, kunnen de bekende antimicrobiële activiteit alcoholazijn, vooral anti-Candida
eigenschappen verklaren. Bovendien heeft het lage kosten en gemakkelijke toegang [12,13]. Deze studie had als doel om de in vitro
antifungale effecten op alcohol azijn op Candida
spp. Evalueren en het effect daarvan op de fysische eigenschappen van acrylhars te controleren met betrekking tot ruwheid en kleurverandering oppervlak.
Methods
alcoholazijn merk Minhoto® batch L281D (Ind. Reunidas Raymundo da Fonte SA, Paulista, PE, Brazilië) werd gebruikt als het testproduct gemaakt met 4% azijnzuur (0,04 g /ml) in de samenstelling. Het product is getest voor de minimale remmende concentratie (MIC), Minimum fungicide Concentratie (MFC), microbiële groei kinetiek, remming van Candida
spp. hechting aan het oppervlak van acrylhars en effecten op oppervlakte ruwheid en kleurparameters. Nystatine (Sigma - Aldrich Brasil, Sao Paulo, SP, Brazilië) werd als een positieve controle. Tijdens de tests werden controles voor gist levensvatbaarheid ook uitgevoerd Ondernemingen De volgende stammen werden gebruikt:. Candida albicans
ATCC 76.485, Candida albicans
LM 21, Candida albicans
MI03, Candida albicans
LM 615, Candida albicans
LM 13, Candida tropicalis
, ATCC 13803, Candida tropicalis
LM 33 en Candida tropicalis
LM 70. Kolonies werden in 5 ml steriele zoutoplossing gesuspendeerd, 0,145 mol /l ( 0,85% NaCl). De verkregen suspensie werd in een vortex mixer (Phoenix ®) gedurende 15 seconden, en celdichtheid werd ingesteld onder toepassing van een spectrofotometer met 0,5 McFarland schaal een golflengte van 530 nm.
Antimicrobiële werking (MIC en MFC)
MIC werd bepaald door het microdilutie techniek met 96 putjes microplaten [14]. Een totaal van 100 pl 2-voudig geconcentreerde Sabourand Dextrose Bouillon (SDB) (Difco Laboratories, Detroit, Mich., USA) werd verdeeld in elk putje, gevolgd door 100 pl teststof (alcohol azijn of nystatine bij initiële concentraties van 40.000 ug /ml en 100 ug /ml). Een portie van 100 pl werd vanuit het eerste putje en vervolgens overgebracht in de volgende, om door te gaan met een 2-voudige seriële verdunning. Ongeveer 10 ul van deze suspensie werden gebracht in elk putje. Werden uitgevoerd in drievoud en de platen werden gedurende 48 uur geïncubeerd bij 35 ° C. MIC werd beschouwd als de laagste concentratie in staat zichtbare groei van de stammen remmen. Om de aanwezigheid van levensvatbare en niet-levensvatbare micro-organismen, 10 pi kleurstof TTC (2,3,5 trifenyltetrazoliumchloride) bevestiging gebruikt, die de activiteit van dehydrogenase enzymen betrokken bij cellulaire ademhaling weerspiegelt kleuring levende monsters red [ ,,,0],15]. Na 24 uur incubatie, werd visueel leesbare uitgevoerd. Ondernemingen De MFC werd bepaald na lezing van MIC door het verzamelen van fracties van 10 ui van de subculturen die overeenkomt met MIC, MICx2 en MICx4 en ze te mengen met 100 ul SDB in 96 putjes microplaten. Na incubatie gedurende 24 uur bij 35 ° C werd visueel leesbare uitgevoerd, gezien de vorming van celgroepen onder in de putjes [14]. Voor betere duidelijkheid van de resultaten, 10 pl TTC toegevoegd en MFC werd gekarakteriseerd als de laagste concentratie van het testproduct in staat de groei van de stammen [14] remmen.
Microbiële groeikinetiek
C. albicans
LM 615 werd geselecteerd voor de presentatie van de beste microbiële groei, terwijl het verkrijgen van MIC en MFC. Voor de test, 0,5 ml van de gistsuspensie werd geïnoculeerd in 4,5 ml SDB met de teststof (alcohol azijn of nystatine) bij concentraties aangepast tot MIC, MICx2 en MICx4. Tijdsintervallen overeenkomt met 0 (t0), 30 (t1), 60 (t2), 120 (t3) en 180 minuten (t4), werd 10 gl aliquots van de suspensie verzameld en gekweekt op Sabourand Dextrose Agar (SDA) (Difco laboratoria, Detroit, Mich., USA) platen. Na incubatie bij 35 ° C gedurende 24 uur werd het aantal kolonievormende eenheden (CFU) geteld. De resultaten zijn weergegeven microbiële dood curves.
Bereiding van acrylhars specimens
Om de remming van schimmels hechting aan het acrylhars, evenals veranderingen in oppervlakteruwheid en kleur verifiëren, werden 78 monsters van circulaire auto-gepolymeriseerde acrylhars (Vip Flash ®, Vipi Tandheelkundige producten, Pirassununga, São Paulo, Brazilië), lijmen 12 mm in diameter en 7 mm dik. De monsters werden onderworpen aan afwerking met wolfraam grinder (1508 Edenta AG, Haupistrasse, Zwitserland), en het oppoetsen met carborundum schuurpapier van verschillende korrelgroftes (220, 330, 600 en 1200) en voelde schijven ingebed in puimsteen pasta /gedestilleerd water, gevolgd door spoelen en sterilisatie.
Remming van fungale hechting aan het oppervlak acrylhars
Achttien monsters werden geplaatst in reageerbuizen die 2,5 ml SDB en 0,5 ml gistsuspensie (C. albicans
LM 615) en 35 ° C gedurende 48 uur. De monsters werden willekeurig verdeeld in drie groepen: GI (n = 6) - Negatieve controle (geen antifungale stof, zodat C. albicans
hechting acrylhars), GII (n = 6) - alcohol azijn en GIII (n = 6) -. nystatine
voldoende hoeveelheden alcohol azijn of nystatine oplossing toegevoegd in de buizen die SDB /gistsuspensie in GII en GIII groepen, resulterend in eindconcentraties gevonden volgens MIC, MICx2 en MICx4. Na de incubatieperiode werden monsters gespoeld en geplaatst in buizen met 5 ml zoutoplossing (0,85% NaCl) en gedurende 60 s. Dan 10 ul van deze oplossing werden gegroeid op SDA-platen, die gedurende 48 uur om verder te lezen en bacteriële telling bij 35 ° C werden geïncubeerd in drievoud. Electronics Test veranderingen in oppervlakteruwheid en kleurparameters van de acrylhars
In de groepen die het effect alcoholazijn concentraties overeenkomend met MIC (n = 6), MIC 2 x (n = 6) en MIC x 4 (n = 6) gebruikt. Zes monsters werden blootgesteld aan nystatine en andere zes geen antischimmelmiddel. Specimens uitgevoerd aan het middengebied, 1 mm naar rechts en 1 mm naar links, en een ruwheid meetinrichting (SJ -201 Mitutayo - Japan, ruwheid parameter Ra: 0,8 Uiterste
mm) ingediend uitvoeren de eerste meting (t = 0) en drie punten. Oppervlakteruwheid (Ra) vastgesteld als de gemiddelde f-waarden van de drie punten. Monsters werden ondergedompeld in de oplossing 30, 60, 120 en 180 minuten, gewassen met gedestilleerd water, gedroogd op absorberend badstof en rugosimetric analyse worden aangeboden.
Bij het meten van de kleurverandering in de acrylhars, 30 specimens waren willekeurig verdeeld in drie groepen, zoals eerder vermeld. In die overeenkomen met alcohol azijn en nystatine, dezelfde concentraties als voorheen werden gebruikt. Monsters werden blootgesteld aan dezelfde tijdsintervallen (0, 30, 60, 120 en 180 minuten). De kleur analyse werd door middel van een kleuranalysator inrichting (Model ACR-1023, Instrutherm Instrumentos de Medição Ltda, Sao Paulo, Brazilië Liquid crystal display van 59 mm x 34 mm; Meting geometrie: 45 ° /0 °; spectraalgebied 400-700 nm, kleurensensor drie foto overbrengers van rode, groene en blauwe kleur) met de RGB systeem.

Statistische analyse de gegevens werden opgenomen in een databank op GraphPad Prism 2004. de antischimmelactiviteit werd geëvalueerd door twee-weg variantieanalyse (ANOVA), gevolgd door Tukey's post-test, met een belang van 5%. De veranderingen veroorzaakt door alcohol azijn op de oppervlakteruwheid en de kleur van de acrylhars evalueren, Kruskal-Wallis en na de test Dunn's werden gebruikt.
Resultaten
De MIC en MFC resultaten azijn alcohol bevattende 0,04 g /ml azijnzuur en nystatine (positieve controle) worden weergegeven in tabel 1. Alle geteste stammen bleken gevoelig voor de werking van alcohol azijn te zijn, met MIC 75% gelijk aan 2500 ug /ml. C. tropicalis
ATCC 13803 en C. tropicalis
LM 33 waren zelfs gevoeliger voor alcohol azijn, toont MIC van 1250 ug ml. Echter, deze stammen (25%) vereist hogere concentraties van het testproduct op fungicide werking stellen samen met MFC waarde van 10 mg /ml. De overige stammen (62,5%) vertoonden MFC waarden gelijk aan 2500 ug /ml, gelijk aan de MIC. Wat nystatine werden alle stammen geremd bij een concentratie van 3,12 ug /ml, dat werd gebruikt als een controle in de andere tests.Table 1 MIC en MFC resultaten alcoholazijn en nystatine op Candida soorten
alcoholazijn
Nystatin
Stammen
MIC (ug /ml)
MFC (ug /ml)
MIC (ug /mL)
MFC (ug /ml)
C. albicans
LM 21
2500
2500

3.12
6,25
C. albicans
MI03
2500
2500
3.12

12.5
C. albicans
LM 615
2500
5000
3.12
12.5

C. albicans
LM 13
2500
2500
3.12
3.12

C. albicans
ATCC 76.485
2500
2500
3.12
6,25
C. tropicalis
ATCC 13803
1500
10.000
3.12
12.5
C. tropicalis
LM 33
1500
10.000
3.12
3.12
C. tropicalis
LM 708

2500
2500
3.12
3.12
Figuur 1 toont de microbiële dood bochten in de aanwezigheid van alcohol azijn in concentraties die overeenkomen met MIC, MIC × 2 en MIC × 4 als functie van de tijd. Waargenomen werd dat de eerstgenoemde concentraties was er schimmelwerende activiteit van 0 tot 180 minuten. Voor MIC × 4, schimmelwerende activiteit van het testproduct werd gedetecteerd van 0 tot 120 minuten, gevolgd door schimmeldodend effect. De positieve controle (nystatine) op MIC, MIC × 2 en MIC × 4 toonde schimmelwerend effecten op alle tijdstippen. . Figuur 1 Microbial dood curve versus tijd alcoholazijn in MIC, MIC × 2 en 4 × MIC concentraties
statistisch significant verschil werd waargenomen tussen het effect van alcohol azijn en nystatine (p & lt; 0,05), en ook met betrekking tot de negatieve controle, voorgesteld door de afwezigheid van antischimmelmiddel. Deze gevolgtrekking kan worden gecontroleerd in figuur 2, met name ten tijde 120 tot 180 minuten, duidelijk het begin van de fungicide activiteit alcoholazijn. Figuur 2 Microbiële dood versus
tijd curve, die de relatie tussen alcohol azijn (azijnzuur) en nystatine, gebruikt MIC × 4, en controle (afwezigheid van schimmelwerende stof) (2 - Way ANOVA, p & lt; 0,0001, Turkije , p & lt;. 0,05)
Figuur 3 toont gegevens over de effectiviteit van alcohol azijn op de remming van de adhesie van C. albicans
LM 615 tot acrylhars specimens, waaruit de werking van azijnzuur en nystatine (p & lt; 0,05). De voormalige was in staat om microbiële aanhechting te verminderen bij MIC en MIC × 2, en volledig te voorkomen dat het op MIC × 4. Figuur 3 Hechting testen en CFU tellen na de werking van alcohol azijn, nystatine en controle (afwezigheid van schimmelwerende stof).
de oppervlakteruwheid (Ra) analyse toonde geen significante verandering (groter dan 0,2 micrometer) voor monsters blootgesteld aan alcohol azijn (tabel 2) .table 2 oppervlakteruwheid (Ra) in micrometer van de tijd de werking van alcohol azijn ingediend specimens
Tijd (min)
Alcohol azijn
Nystatin
Controle
MIC
MIC × 2
MIC × 4


0

0.16

0.14

0.11

0.11

0.09


30

0.17

0.13

0.12

0.77

0.11


60

0.16

0.15

0.12

1.1

0.11


120

0.15

0.14

0.16

1.2

0.09


180

0.16

0.13

0.16

1.2

0.1


Geen significant verschil tussen de groepen waargenomen (p & gt; 0,05 - Kruskal Wallis test).
Wat de eventuele kleurveranderingen, wezen de resultaten erop dat alcoholazijn geen invloed op de kleur van de blootgestelde monsters op tijdstippen van 0 tot 180 minuten bij verschillende concentraties, zoals in tabel 3 3.Table Kleur (waarden in het RGB schaal) van monsters na blootstelling aan de inwerking van alcoholazijn
Blootstellingstijd (min)
nystatine
0
60
120
180
Alcohol azijn MIC

2 2 4 1 6 9 (a) 1 4 4
(a)
(a)
(a)
alcohol azijn MIC x Pagina 2
(a)
(a)
(a)
(a)

Alcohol azijn MIC x4

(a)

(a)

(a)

(a)


Nystatin

(a)

(a)

(a)

(a)


Control

(a)

(a)

(a)

(a)


(A) identieke waarden.
Discussie
De resultaten van onze studie geven aan dat alcohol azijn heeft schimmelwerende en schimmeldodende effecten op de geteste stammen van Candida
. Eerdere studies hebben reeds de antischimmelactiviteit van azijn [16] gecontroleerd, hoewel MIC en MFC waarden niet worden uitgedrukt volgens de microverdunnings- techniek, die een goedkope en snelle werkwijze reproduceerbare resultaten levert en vereist kleine hoeveelheden microbiële suspensie en cultuur media [14,17,18].
het werkingsmechanisme van azijnzuur, het hoofdbestanddeel van alcohol azijn, houdt waarschijnlijk verband met een verlaagd potentieel waterstof, waardoor diffusie van het zuur vergemakkelijkt door het plasmamembraan van schimmelcellen [ ,,,0],18]. In de literatuur is ook gemeld remmend effect azijnzuur op 14α-lanosterol-demethylase, een belangrijk enzym betrokken bij de vorming van ergosterol, die essentieel is voor de integriteit van de schimmel plasmamembraan [19,20].
Betrekking nystatine de MIC en MFC waarden voor alle geteste stammen werden volgens de literatuur [21]. Nystatine werd gekozen als controle omdat het een standaard antifungale schaal gebruikt voor de topische behandeling van schimmelinfecties in de mondholte [22]. Het werkingsmechanisme is gerelateerd aan de remming van enzymen betrokken bij de vorming van ergosterol en derhalve permeabiliteit van celmembranen [23].
Microbiële groei kinetiek is een belangrijke variabele bij de schimmelwerende of fungicide activiteit van een bepaalde stof evalueren alsmede de invloed van de blootstellingstijd aan het proces van celdood [24] bepalen. De microbiële kinetiek alcoholazijn vertoonde schimmelwerende activiteit microfoon en MICx2 het tijdsinterval tussen 0 en 120 minuten, en vanaf dat moment was er fungicide activiteit bij MICx4 (10 mg ml). Fungicide activiteit als zodanig wordt beschouwd als het product kan drie logaritmische eenheden verminderen naar de basis 10, en wanneer deze aanpassingen waarin de schimmelwerende gedrag.
Erkend als een dynamisch proces waarmee nieuwe antimicrobiële middelen te evalueren, de microbiële dood versus
tijd curve is niet vermeld in eerdere studies waarbij alcohol azijn [25], belemmeren de standaardisering van de resultaten en de vergelijking tussen hen. Deze studies hebben handeling wordt die lijken te zijn willekeurig gekozen, variërend van 10 minuten tot acht uur, zonder referentiedocumentatie gebaseerd op microbiële kinetiek [17,26] getoond. En gebruikte standaard antifungale, nystatine werd ook getest op de microbiële dood versus
tijd curve. Eerdere studies hebben aangetoond schimmelwerende activiteit van nystatine [23,27], bevestigende de resultaten van deze studie, hoewel fungicide activiteit kan worden waargenomen bij hogere concentraties.
Bij de selectie van een desinfectiemiddel, moet men de verenigbaarheid ervan met orale evalueren weefsels, en met materialen die de basis van tandprothesen [28] samen. De hechting van Candida spp
. aan het oppervlak van acrylhars is vaak de eerste stap in de kolonisatie van weefsels die in contact komen met het verwijderbare prothese en de neiging om een ​​biofilm vaak resistent tegen conventionele antifungale therapie [29] te vormen. C. albicans species
beschreven als die met groter vermogen om zich aan het mondslijmvlies cellen en het oppervlak van de acrylhars [30], en daarom C. albicans werd
de geselecteerde soort MIC en MFC bepalen . Eerdere studies hebben aangetoond dat een onverdunde alcohol azijnoplossing kon de aanhechting van micro-organismen remmen, waaronder C. albicans, Belgique Om acrylhars [31], die ook werd waargenomen in deze studie. Echter, hebben andere onderzoeken aangetoond dat alcohol azijn was niet in staat de adhesie van C. albicans
cellen acrylhars [32] remmen.
Geen significante veranderingen waargenomen in de gemiddelde oppervlakteruwheid van het materiaal bevestigt eerdere bevindingen [31,33]. Mutaties oppervlakteruwheid geïdentificeerd na blootstelling aan verschillende alcoholazijn concentraties niet boven de drempelwaarde van 0,2 urn, waarboven invloed van de oppervlakteruwheid op de hechting van micro-organismen wordt verwacht, aangezien oneffenheden dienen als microbiologisch niche, beschermt infectueuze agentia uit de mechanische werking van tandenpoetsen [34].
Deze studie toonde geen kleurveranderingen in de acrylhars na een periode van 180 minuten blootstelling aan alcohol azijn en nystatine bevestigt eerdere resultaten [35]. De oorspronkelijke kleur van een hars kan worden veranderd door de inname van grote hoeveelheden kleurstoffen, vloeistofabsorptie en onderdompeling in desinfecterende oplossingen die de oppervlakteruwheid beïnvloeden, beschadigen de esthetiek van het materiaal [36]. Een onderzoek waarbij azijn toonde kleurverandering acrylhars na een interval 12 tot 30 dagen onderdompeling [31]. Zelfs gezien het belang van het kennen van de gevolgen van langdurige blootstelling van acrylhars de werking van desinfectiemiddelen moeten kortere tijden zoals gebruikt in de onderhavige studie worden gebruikt, aangezien het tijdstip waarop protheses zijn buiten de mondholte simuleren. Eerdere studies hebben het effect van desinfecterende oplossingen op de fysische eigenschappen van acrylhars geëvalueerd. Ethanol, in verschillende concentraties, kan gevolgen ruwheid and color [33] produceren. De oppervlakteruwheid van de acrylhars was hoger bij het gebruik van 3,8% natriumperboraat en lager met 2% chloorhexidine gluconaat [31]. Ondernemingen De resultaten van deze test toonden wetenschappelijke gegevens over de aanzienlijke antischimmeleffect alcoholazijn tegen Candida
species, alsook zonder negatieve invloed op de acrylhars. Deze bevindingen ondersteunen het mogelijke gebruik van het product, dat moet gaan door middel van verdere laboratorium onderzoeken naar de effecten op de multi-species biofilmvorming, microhardness van acryl; klinisch onderzoek moet ook worden overwogen om de veiligheid, verdraagbaarheid en de klinische werkzaamheid van deze stof te bepalen.
Conclusie
Alcohol azijn toonde in vitro
activiteit tegen Candida
stammen die betrokken zijn bij kunstgebit stomatitis, met een fungicide actie na 120 minuten blootstelling aan een concentratie van 10 mg /ml. Het was ook in staat de adhesie van C. albicans voorkomen Belgique Om acrylhars en niet op het oppervlak ruwheid en de kleur van de acrylhars veroorzaken na twee uur blootstelling.
Verklaringen
dank
Wij danken de postgraduate opleiding in de tandheelkunde, de Federale Universiteit van Paraíba, voor de financiële ondersteuning voor dit onderzoek.
concurrerende belangen
de auteurs verklaren dat ze geen concurrerende belangen. bijdragen
Authors '
RDC bedacht van de studie, en nam deel aan het ontwerp en de coördinatie en geholpen om het manuscript op te stellen. ACLGM verricht de microbiologische test en de test van de verandering in de kunsthars. EOL deel aan de opzet van het onderzoek en coördinatie en hielp voerde de microbiologische assay. AUDB deel aan de opzet van het onderzoek en de statistische analyse uitgevoerd. JAO deelgenomen aan de voorbereiding van de monsters in acryl hars en geholpen om het manuscript op te stellen. ALC voerde de test van de kleurverandering in de acrylhars exemplaren. Alle auteurs gelezen en goedgekeurd het definitieve manuscript.